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大鼠心肌細(xì)胞原代培養(yǎng)及鑒定

  • 發(fā)布日期:2021-12-18      瀏覽次數(shù):1018
    •      原代心肌細(xì)胞培養(yǎng)是體外研究心血管疾病相關(guān)機(jī)制的主要手段和基本技術(shù)?;A(chǔ)實(shí)驗(yàn)中,與細(xì)胞系相比,原代心肌細(xì)胞的形態(tài)及電生理方面更接近在體細(xì)胞,因此,培養(yǎng)原代心肌細(xì)胞的質(zhì)量直接關(guān)系實(shí)驗(yàn)的進(jìn)程及結(jié)果。
        材料與方法
        1.實(shí)驗(yàn)動物和主要試劑
        1)新生24h內(nèi)的SD大鼠10只,雌雄不限;
        2)DMEM高糖培養(yǎng)基(CellMax);
        3)胎牛血清(CellMax);
        4)胰蛋白酶(CellMax);
        5)雙抗(CellMax);
        6)D-Hanks;
        7)5-溴脫氧尿嘧啶核苷
        (5-Bromoo2'-deoxyuridine,5-Brdu);
        8)臺盼藍(lán)等。
        2.主要實(shí)驗(yàn)儀器
        1)高性能無菌超凈臺;
        2)CO2培養(yǎng)箱;
        3)倒置相差顯微鏡;
        4)離心機(jī);
        5)恒溫水浴鍋;
        6)磁力攪拌器、
        7)200目鋼網(wǎng);
        8)血細(xì)胞計(jì)數(shù)器、
        9)解剖器械等。
        注:
        所有手術(shù)器械、離心管均高壓滅菌。
        玻璃器皿用強(qiáng)酸浸泡過夜,流水沖洗10次,去離子水沖洗3次,烘干后高壓滅菌備用。
        3.心肌細(xì)胞培養(yǎng)
        新生24h內(nèi)的SD大鼠10只,體積分?jǐn)?shù)為75%的乙醇浸泡消毒2遍,每次約8s。無菌眼科剪沿胸骨正中人剪,盡量避免剪破其他臟器產(chǎn)生污染。用無菌鑷子捏取心臟,迅速置于D-Hanks液中,仔細(xì)剝離大血管及多余組織,D-Hanks液反復(fù)認(rèn)真沖洗至少3次,洗去殘留的血細(xì)胞及其他雜質(zhì)。
        將心臟剪成約0.5mm×0.5mm×0.5mm的組織塊放人錐形瓶,加入10mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.08%的胰蛋白酶封口,放入37℃水浴鍋中消化,轉(zhuǎn)子轉(zhuǎn)速約90~100r·min-1。
        第1次消化8min后靜置棄上清。剩余組織進(jìn)行多次消化,每次2min,收集每次消化后的上清液,直至全部組織消化*。向上清液中加入體積約1/4~1/3的DMEM培養(yǎng)基(含15%的胎牛血清)以終止上清液中殘余胰蛋白酶的消化作用,防止損傷細(xì)胞,保證成活率。全部上清液以1200r·min-1離心12min,所得沉淀用約20mL培養(yǎng)基輕輕吹散,用移液管緩慢吹打均勻,細(xì)胞懸液經(jīng)200目孔徑鋼網(wǎng)過濾后移入培養(yǎng)瓶中進(jìn)行差速貼壁(注意搖勻),55min后取細(xì)胞懸液以1000r·min-1離心10min,所得沉淀用培養(yǎng)基(pH=7.2)輕輕吹散。
        根據(jù)臺盼藍(lán)染色結(jié)果及細(xì)胞計(jì)數(shù)結(jié)果調(diào)整細(xì)胞密度,以5×108L-1密度接種到培養(yǎng)板或培養(yǎng)瓶中,放入37℃的溫箱中培養(yǎng),24h后用D-Hanks液或磷酸鹽緩沖液輕輕沖洗去未貼壁的細(xì)胞,可得到視野清晰、密度均勻的貼壁心肌細(xì)胞。然后換新鮮培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),72h再次換液,根據(jù)細(xì)胞生長狀態(tài)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
        4.心肌細(xì)胞質(zhì)量評價
        1)心肌細(xì)胞觀察
        倒置顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)、生長狀態(tài)、搏動頻率、節(jié)律、強(qiáng)度,觀察培養(yǎng)液色澤變化以判斷心肌細(xì)胞生長是否良好。
        2)臺盼藍(lán)拒染法計(jì)算細(xì)胞活力及細(xì)胞純度的鑒定
        心肌細(xì)胞懸液用等量體積分?jǐn)?shù)為0.4%臺盼藍(lán)溶液混勻后用血細(xì)胞計(jì)數(shù)板分別計(jì)數(shù)活細(xì)胞和死細(xì)胞數(shù)。鏡下死細(xì)胞染成藍(lán)色,活細(xì)胞拒染而呈透亮狀態(tài)。
        細(xì)胞存活率=活細(xì)胞數(shù)/總細(xì)胞數(shù)(活細(xì)胞+死細(xì)胞)×100%。
        用免疫熒光法或通過細(xì)胞種板72h后計(jì)數(shù)搏動心肌細(xì)胞百分?jǐn)?shù)測定心肌細(xì)胞純度。
        心肌細(xì)胞免疫熒光鑒定
       ?。?)在培養(yǎng)板中將已爬好細(xì)胞的玻片用PBS(0.01M)浸洗3次,每次3min;
        (2)用4%的多聚甲醛固定爬片15min,PBS浸洗玻片3次,每次3min;
       ?。?)0.5%TritonX-100(PBS配制)室溫通透20min(細(xì)胞膜上表達(dá)的抗原省略此步驟);
       ?。?)PBS浸洗玻片3次,每次3min,吸水紙吸干PBS,在玻片上滴加正常山羊血清,室溫(6%山羊血清,不用BSA,PBS配置)封閉30min;
        (5)吸水紙吸掉封閉液,不洗,每張玻片滴加足夠量的稀釋好的ACTA1一抗(一抗?jié)舛龋?:20,一抗稀釋液:PBS配置)并放入濕盒,4℃孵育過夜;
       ?。?)37度復(fù)溫45min,加熒光二抗(二抗換成羊抗兔IgG(H+L)/RBITC,二抗?jié)舛龋?:200,二抗稀釋液:PBS配置):PBS浸洗爬片3次,每次3min,吸水紙吸干爬片上多余液體后滴加稀釋好的熒光二抗,濕盒中20-37℃孵育1h,PBS浸洗切片3次,每次3min;
        注意:從加熒光二抗起,后面所有操作步驟都盡量在較暗處進(jìn)行。
       ?。?)復(fù)染核:滴加DAPI避光孵育5min,對標(biāo)本進(jìn)行染核,PBS5min×4次洗去多余的DAPI;
       ?。?)用吸水紙吸干爬片上的液體,用含抗熒光淬滅劑的封片液封片,然后激光共聚焦拍照。
        結(jié)果
        1.心肌細(xì)胞形態(tài)觀察
        心肌組織消化后所有心肌細(xì)胞均為圓形,培養(yǎng)2~3h部分細(xì)胞開始貼壁,12h后可見梭形細(xì)胞,細(xì)胞逐漸增大,部分貼壁的細(xì)胞出現(xiàn)自發(fā)性搏動;24h細(xì)胞幾乎全部貼壁,可見多角形細(xì)胞及較多細(xì)胞搏動;48h細(xì)胞形態(tài)為多角形或梭形,細(xì)胞伸出的偽足相互接觸交織成網(wǎng),逐漸形成細(xì)胞簇或細(xì)胞單層,鋪滿瓶底。72h后99%以上細(xì)胞自律搏動,搏動頻率、節(jié)律、強(qiáng)度穩(wěn)定,頻率70~130次·min-1;大部分細(xì)胞相互連接,呈現(xiàn)同步搏動,同一培養(yǎng)瓶中細(xì)胞的搏動頻率一致。
        24h心肌細(xì)胞
        48h心肌細(xì)胞
        2.心肌細(xì)胞活力測定結(jié)果臺盼藍(lán)染色顯示活細(xì)胞數(shù)>85%。
        3.心肌細(xì)胞純度測定通過細(xì)胞種板72h后計(jì)數(shù)搏動心肌細(xì)胞百分?jǐn)?shù),所得心肌細(xì)胞純度>95%。
        4.心肌細(xì)胞免疫熒光鑒定結(jié)果
        心肌細(xì)胞(細(xì)胞核)
        心肌細(xì)胞(ACTA1抗體表達(dá))
        心肌細(xì)胞(合成圖)
        討論
        1.鼠齡選擇多數(shù)文獻(xiàn)推薦1~3d大鼠,新生大鼠在出生后3d內(nèi)心肌細(xì)胞尚未分化,心肌細(xì)胞培養(yǎng)時成活率高。
        通過大量實(shí)驗(yàn)觀察認(rèn)為最好選擇出生24h內(nèi)新生大鼠。
        2.無菌操作防止污染是培養(yǎng)細(xì)胞成敗的關(guān)鍵之一。
        常見為細(xì)菌、支原體等污染,可導(dǎo)致提取后的細(xì)胞不貼壁、不生長、生長后狀態(tài)不佳等。要嚴(yán)格執(zhí)行實(shí)驗(yàn)室無菌操作規(guī)則且培養(yǎng)基中要加入終濃度為體積分?jǐn)?shù)1%的雙抗液。
        3.組織消化反復(fù)實(shí)驗(yàn)顯示,0.5mmx0.5mmx0.5mm體積的組織塊更易快速消化且避免長時間消化給細(xì)胞帶來損傷。
        常用消化液有胰蛋白酶及膠原酶I、Ⅱ等。胰蛋白酶濃度推薦質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.060%-0.125%,膠原酶質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.06%-0.10%。
        單獨(dú)用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.08%胰蛋白酶較實(shí)用。消化過程應(yīng)在37℃下進(jìn)行,用低速磁力攪拌器(80~100r·min-1)或手動搖晃及吹打使酶與組織充分混勻。
        4.細(xì)胞洗滌;剛消化過的細(xì)胞本身附帶消化酶,不利于細(xì)胞貼壁,因此,至少要洗滌細(xì)胞2~3次。將收集好的上清液加入含體積分?jǐn)?shù)15%胎牛血清的培養(yǎng)基以終止消化,然后離心細(xì)胞(1200r·min-1,12min)。
        用培養(yǎng)基將離心后沉淀緩和吹散、混勻、過濾后再次離心(1000r·min-1,10min),如此重復(fù)1~2次,可洗去黏附細(xì)胞的消化酶,有利于細(xì)胞貼壁。
        5.細(xì)胞純化:多選用差速貼壁分離法加化學(xué)抑制法。其原理是心臟組織消化后主要有2種細(xì)胞,即成纖維細(xì)胞和心肌細(xì)胞。
        由于在培養(yǎng)瓶中大部分成纖維細(xì)胞能在短期內(nèi)貼壁(50~120min),而心肌細(xì)胞則需2~24h,因此,通過差速貼壁法能獲得較純的心肌細(xì)胞,約95%。差速貼壁分離細(xì)胞后,要在培養(yǎng)基中加入5-Brdu,終濃度為0.1mmol·L-1,目的是抑制成纖維細(xì)胞的生長。
        6.細(xì)胞種植:細(xì)胞密度約5×108L-1時,72h后可見細(xì)胞伸展、接觸,細(xì)胞間進(jìn)行信息交流,形成同步搏動;(1~3)×108L-1時可觀察單個細(xì)胞,可見到多種形態(tài)的細(xì)胞。
        種植細(xì)胞24h后用磷酸鹽緩沖液或D-Hanks液輕輕洗滌培養(yǎng)板或培養(yǎng)瓶,洗去未貼壁細(xì)胞得到可供實(shí)驗(yàn)的理想細(xì)胞。
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